我們知道流式實驗中抗體標記的數量越多得到的信息就越詳細和準確，以此同時，實驗操作也變得更加復雜。多色流式實驗中的補償操作，一直以來都是流式使用者非常關心的問題。甚至有人認為，由于目前熒光染料的光譜普遍比較寬，可能會在相鄰的多個通道都造成比較大的干擾，因此很難在流式上完成超過18色以上的實驗。事實是否真是這樣呢？恰巧哈佛醫學院附屬麻省總醫院的Dr. Ravi Mylvaganam與我們分享了他在6激光21色的CytoFLEX LX上做的一個多色實驗。我們一起來看看。

Dr. Ravi Mylvaganam采用20個熒光抗體以及一個細胞死活染料組成21色的panel，可同時檢測多群記憶、效應T細胞，調節性T細胞，NK細胞甚至是干細胞樣T細胞等細胞亞群，詳細的抗體和染料標記如下所示：

實驗樣本準備步驟：
1. 標記一個樣本管，在管中添加3 µL以下抗體：

• 1) CD3 BUV395
• 2) CD19 BUV496
• 3) CD56 BUV737
• 4) CD25 BV605
• 5) CD95 BV650
• 6) CD38 BV786
• 7) CD16 PerCP
• 8) CD4 PerCP-eFluor710
• 9) CCR4 PE-TexasRed
• 10) CCR7 PC7
• 11) CD8 AF790

2. 添加25 µL Brilliant Stain Buffer，渦旋混勻4秒；然后加入100 µL全血，再次渦旋混勻4秒后，在37ºC下避光孵育20分鐘
3. 在試管中添加5 µL以下抗體：

• 1) CD57 Pacific Blue
• 2) CD45 Krome Orange
• 3) CD45 RA FITC
• 4) CCR6 PE
• 5) CD14 PC5
• 6) PD-1 (CD279) PC5.5
• 7) CD27 APC
• 8) CD127 APC-A700
• 9) CD28 APC-A750

4. 渦旋混合試管4秒后室溫避光孵育20分鐘
5. 在管中添加1 mL VersaLyse裂解液，渦旋混合2～3秒，室溫下避光孵育15分鐘
6 樣本200g離心5分鐘，棄去上清液
7. 在試管中添加5 µL IR Fixable染料，渦旋混合2～3秒，室溫下避光孵育20分鐘
8. 添加2 mL PBS重懸細胞，200g離心處理試管5分鐘，棄去上清液
9. 添加0.9 ml PBS和0.1 ml IOTest3固定液重懸細胞，可準備上機檢測
10. 同時按照上述的孵育、離心操作制備單染管

 

實驗結果如下

從實驗結果圖可以看出，這個21色方案的結果分群清晰，不論是常規的CD3+CD4+Th細胞還是含量較低的Treg或者干細胞樣T細胞，都能很好的檢測到，看來對于CytoFLEX LX而言，21色實驗也不是一個難題。如果您需要該方案詳細的信息，可與我們聯系。

多色補償問題的簡化，與流式細胞儀技術的發展密切相關。遙想小編當年，那個流式細胞儀用完后還要用紅布蓋起來的年代，我剛開始接觸的是一臺4色的流式，當時4色實驗就是“多色”實驗了！那時沒有離線補償也沒有自動補償，流式也沒做得那么頻繁，調補償是相當刺激的操作：先在17寸顯示屏上畫滿所有通道兩兩對應的散點圖，上樣之后一定要眼疾手快反應迅速默念“橫平豎直”，如果相關的門沒圈好，或者看到補償矩陣nao zi蒙圈不知道調哪里，一著急就手足無措，經常一管單染管跑完補償還沒調好所以實驗前師兄師姐往往要提醒“單染管多準備點樣本”……

現在儀器的補償操作相比以前，我的天，簡直不要好太多！

拿這個做21色方案的CytoFLEX LX舉個栗子：

首先，它可以自動調補償，用戶只需要把單染管全跑一遍，圈好相應的陰陽性細胞群，點擊計算補償就OK了，無論是2色還是21色都是這么簡單的操作。畫一堆圖看橫平豎直？不存在！

其次，它可以離線調補償。樣本比較多，想測完再拷回去慢慢分析？沒問題！

然后，CytoFLEX LX有補償庫功能，只要是做過的染料就可以把這個染料的補償信息存到庫里，以后做實驗可以直接讀取，避免需要重復做單染管的煩惱。 最后，這個是壓軸的技能，方案里調好的補償會根據后續電壓的調整而自動調整。也就是說，以后做完補償，跑樣本時發現某個通道的電壓如果再調一點就完美了，如果是以前或其他儀器，您需要調整電壓后再重新調補償，而現在在CytoFLEX LX 上，您直接調電壓就好了！

其實很簡單， 其實很自然，多色的補償并沒有那么難！雖然補償的操作更智能化了，但目前多色實驗中抗體和染料的選擇以及樣本的處理仍然是一門學問。如果您需要了解多色實驗更多的信息，比如染料的搭配和選擇，以及樣本處理的方法，您也可以聯系貝克曼公司索取資料。

* CytoFLEX LX流式細胞儀僅用于科研，不用于臨床診斷。